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预制胶 Tris-Glycine  6%, 10孔, 1.5mm
预制胶 Tris-Glycine 6%, 10孔, 1.5mm
预制胶 Tris-Glycine 6%, 10孔, 1.5mm

预制胶 Tris-Glycine 6%, 10孔, 1.5mm

 详情说明

​预制胶 Tris-Glycine  6%, 10孔, 1.5mm

货号:ZK-PL3611​

规格:10片/盒​

 预制胶 Tris-Glycine是一款安全、快捷、高性能的预制聚丙烯酰胺凝胶,常用于PAGE和Western blot检测。特点如下:

Ø 采用自动化的灌胶生产技术,产品质量好、稳定性高、重复性佳。

Ø 采用玻璃胶板,有效减少蛋白非特异性吸附,使蛋白条带更为敏锐,清晰。

Ø 胶夹打开极为轻松,只需用刀片在胶夹一侧轻轻划一下即可打开。

Ø 兼容市场上主流的mini电泳槽,如Bio-Rad, Invitrogen, 天能和君意东方等

基本信息:

胶板尺寸:宽×高×厚度为98×84×4.1mm;

凝胶厚度:1.5mm;

凝胶尺寸为:宽×高×厚度为81×74×1.5mm;

孔数:10孔,15孔;

丙烯酰胺与甲叉双丙烯酰胺的比例:29:1;

最大上样量:60μL,30μL;

浓缩胶:4%,1.5cm;

包装:10片/盒。

使用说明:

1. 将GLASS Gel Tris-Gly gel预制胶从包装袋中取出。

2. 将预制胶固定在电泳槽中。

3. 准备电泳缓冲液:推荐使用普利莱B1005 10X电泳缓冲液,取50ml母液,加450mL ddH2O,得到500mL 1X 电泳缓冲液。

4. 内槽加满电泳液,外槽的电泳液最低须加到1/3液面处,最高不可漫过胶板,再缓慢地将梳子拔出。

5. 上样前请使用移液器吸取电泳缓冲液轻轻吹打加样孔,去除加样孔内残余的胶液。

6. 上样:将蛋白样品与5X 变性loading buffer进行4:1混合均匀,加热处理。注意枪头不要戳破凝胶,不要过度插入梳孔使胶板变形造成漏液。

7. 电泳条件:180V, 60 min,当溴酚蓝指示带电泳至胶板底部,或实验预定位置时,即可结束电泳。

8. 电泳结束,取出凝胶。用刀在侧边胶处,沿着两片玻璃的缝隙切开封胶材料,即可打开玻璃板,取胶时,需在凝胶和玻璃条之间,沿着玻璃条划一刀,防止取胶时,发生粘连使胶破

碎。(使用美工刀时请注意安全)

拆胶:

1.先沿侧边胶处简单划一刀(或先将玻璃板侧边多余封胶材料去除);

2.用刀在侧边胶处,沿着玻璃板和玻璃条的缝隙切开封胶材料(箭头处),轻轻打开玻璃板;

3.取胶时,需在凝胶和两侧玻璃条之间沿着玻璃条划一刀,防止取胶时发生粘连使凝胶破碎。

 

产品运输和保存:

1.常温运输,常温保存时应放置于阴凉处,避免温度剧烈变化和阳光直射。

2.4-8℃保存,可以存放12个月。

3.请勿置于0℃以下,凝胶在0℃以下会冻凝,产生气泡和裂纹,凝胶报废。


 预制胶 Tris-Glycine兼容的电泳槽:

a.Bio-Rad Mini-PROTEAN (II/3 /Tetra System)

b.Hoefer Mighty Small (SE 250/ SE 260/ SE 280)

c.Life Technology Novex Mini-Cell (需与特制挡板配合使用,免费提供)

d.北京六一  DYCZ-25E、DYCZ-24K、DYCZ-24KS、DYCZ-24KF

e.君意东方 JY-SCZ2+

f.天能 VE180

g.或其它胶板宽度在10厘米的电泳槽

在Life Technology Novex电泳槽中的应用:

需特制挡板,请在订购本产品时告知,普利莱会免费赠送该特制挡板(2mm)。将挡板置于凝胶的外侧



在Bio-Rad电泳槽中的应用:

Bio-Rad Mini-PROTEAN系列电泳槽的U型密封条顶部有突起结构,而预制胶 Tris-Glycine系列预制胶的短玻板是凹形结构,因此该部位是平的,电泳前需将具有突起结构的密封条取出后反过来安装,是平滑面朝外,从而防止漏液(如下图所示)。另有厚度约为0.5mm的塑料垫片,请根据您电泳槽的实际宽度进行相应的增加。

a.将Bio-Rad电泳槽中的U型密封条(如图绿色部分) 拉出,注意这时的密封条两端是有突起的,突起的这面为正面,无突起的为反面。

b.将密封条旋转180度(正面朝里,反面朝外),重新装回电泳槽中,注意把密封圈周边压实,防止发生漏液。

c.放置好预制胶进行正常的电泳操作即可。


注意事项:

1. 电压为180V电泳时,1块胶的电流在75mA左右,2块胶的电流在150mA左右,随时间增加电流逐步降低。湿转时120V恒压转膜60-90min。

2. 为达到更好的转膜效果,可以根据预制胶上残留的预染marker及膜上的预染marker确定转膜效率,并对转膜条件进行适当调整。目的蛋白的分子量,凝胶浓度及转膜液中的甲醇浓度都会影响转膜效率。 大蛋白尽量选择低浓度的胶。

3. 电泳结束后可以使用Tris-Gly转膜液进行转膜。将凝胶浸泡在转膜液中10-15min, 使凝胶中的缓冲液得到充分平衡,再进行转膜。

4. 上样时枪头不要过度插入梳孔,以免戳破凝胶造成漏液。

5. 仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。

6. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

 


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